Clasificación de los medios de cultivo
- Según su estado físico:
o Sólido: Se utiliza un agente solidificante (el agar) en una proporción por encima del 15% (12-15 g/L). En ellos las bacterias crecen con mayor dificultad, pues los nutrientes se agotan con rapidez en el punto donde se desarrollan no obstante nos permite el aislamiento, purificación y visualización de su crecimiento en colonias, así como su posible identificación a través de medios específicos y diferenciales de caracteres sólidos, elaboración de antibiogramas, etc.
o Semisólido: Presentan agar en su composición e una proporción menor al 5% (2,5g/L). Se utiliza especialmente para el estudio de algunas propiedades bioquímicas (oxidación-fermentación)
o Líquido: No contienen ningún tipo de agente solidificante y son también denominados caldos. Favorecen mucho el desarrollo y multiplicación de las bacterias porque al difundirse éstas por todo el medio encuentran con facilidad las sustancias que necesitan para nutrirse. Se de gran utilizad para la realización de múltiples pruebas.
- Según su composición
o Medios naturales: Aparecen sustancias orgánicas e inorgánicas que se presentan de manera natural.
o Medios semisintéticos: Aparecen moléculas naturales hidrolizadas.
o Medios sintéticos: Aparecen sustancias químicas definidas. Son los más utilizados y siempre deberán contenter:
* Fuente de carbono o azúcar
* Una fuente de nitrógeno
* Compuestos minerales, y entre ellos, oligoelementos
* Factores de crecimiento
o Medios complejos: Su composición no está exactamente definida. Su uso está restringido (sólo en virología y parasitología)
jueves, 14 de mayo de 2009
tarea 3
Clasificación de los medios de cultivo
- Según su estado físico:
o Sólido: Se utiliza un agente solidificante (el agar) en una proporción por encima del 15% (12-15 g/L). En ellos las bacterias crecen con mayor dificultad, pues los nutrientes se agotan con rapidez en el punto donde se desarrollan no obstante nos permite el aislamiento, purificación y visualización de su crecimiento en colonias, así como su posible identificación a través de medios específicos y diferenciales de caracteres sólidos, elaboración de antibiogramas, etc.
o Semisólido: Presentan agar en su composición e una proporción menor al 5% (2,5g/L). Se utiliza especialmente para el estudio de algunas propiedades bioquímicas (oxidación-fermentación)
o Líquido: No contienen ningún tipo de agente solidificante y son también denominados caldos. Favorecen mucho el desarrollo y multiplicación de las bacterias porque al difundirse éstas por todo el medio encuentran con facilidad las sustancias que necesitan para nutrirse. Se de gran utilizad para la realización de múltiples pruebas.
- Según su composición
o Medios naturales: Aparecen sustancias orgánicas e inorgánicas que se presentan de manera natural.
o Medios semisintéticos: Aparecen moléculas naturales hidrolizadas.
o Medios sintéticos: Aparecen sustancias químicas definidas. Son los más utilizados y siempre deberán contenter:
* Fuente de carbono o azúcar
* Una fuente de nitrógeno
* Compuestos minerales, y entre ellos, oligoelementos
* Factores de crecimiento
o Medios complejos: Su composición no está exactamente definida. Su uso está restringido (sólo en virología y parasitología)
- Según su estado físico:
o Sólido: Se utiliza un agente solidificante (el agar) en una proporción por encima del 15% (12-15 g/L). En ellos las bacterias crecen con mayor dificultad, pues los nutrientes se agotan con rapidez en el punto donde se desarrollan no obstante nos permite el aislamiento, purificación y visualización de su crecimiento en colonias, así como su posible identificación a través de medios específicos y diferenciales de caracteres sólidos, elaboración de antibiogramas, etc.
o Semisólido: Presentan agar en su composición e una proporción menor al 5% (2,5g/L). Se utiliza especialmente para el estudio de algunas propiedades bioquímicas (oxidación-fermentación)
o Líquido: No contienen ningún tipo de agente solidificante y son también denominados caldos. Favorecen mucho el desarrollo y multiplicación de las bacterias porque al difundirse éstas por todo el medio encuentran con facilidad las sustancias que necesitan para nutrirse. Se de gran utilizad para la realización de múltiples pruebas.
- Según su composición
o Medios naturales: Aparecen sustancias orgánicas e inorgánicas que se presentan de manera natural.
o Medios semisintéticos: Aparecen moléculas naturales hidrolizadas.
o Medios sintéticos: Aparecen sustancias químicas definidas. Son los más utilizados y siempre deberán contenter:
* Fuente de carbono o azúcar
* Una fuente de nitrógeno
* Compuestos minerales, y entre ellos, oligoelementos
* Factores de crecimiento
o Medios complejos: Su composición no está exactamente definida. Su uso está restringido (sólo en virología y parasitología)
miércoles, 13 de mayo de 2009
Tarea No.1
- paramecio
1. m. Nombre de un género de protozoos ciliados con especies muy comunes en las aguas dulces de charcas y estanques;algunas son grandes y alcanzan hasta 2 mm de longitud con forma típica de zapatilla. Sus cultivos se utilizan en biología experimental.
2. Escherichia
Figure 1Escherichia coli (Enlarged view)
Figure 2Escherichia coli (Enlarged view)
Figure 3Escherichia coli (Enlarged view)
Figure 4Escherichia coli (Enlarged view)
Figura 1: Células de E. coli B/r teñidas con naranja de acridina visualizadas por microscopía laser confocal de barrido. Los nucleoides fluorescentes y brillantes son visibles en contraste con el citoplasma más oscuro. Las células son aproximadamente 1um de ancho.
Figura 2: Imagen de contraste de fase de E. coli B/r teñida con naranja de acridina. Los nucleoides fluoresentes en microscopía laser confocal de barrido son visibles como una estructura coralina clara contra un citoplasma oscuro. Las células son aproximadamente 1um de ancho.
Figura 3: E. coli B/r teñida con naranja de acridina. Los nucleoides se observan como objetos fluorescentes brillantes contra un citoplasma más oscuro. Las células son aproximadamente 1um de ancho.
Figura 4: Imágen de contraste de fase de células de E. coli B/r montadas en una laminilla cubierta con agar. Las células de los nucleoides aparecen brillantes en contraste con la fase densa del citoplasma. Las células son aproximadamente 1 um de ancho.
Salmonella es un género de bacteria que pertenece a la familia Enterobacteriaceae, formado por bacilos gramnegativos, anaerobios facultativos, con flagelos perítricos y que no desarrollan cápsula ni esporas. Son bacterias móviles que producen sulfuro de hidrógeno (H2S). Fermentan glucosa por poseer una enzima especializada, pero no lactosa, y no producen ureasa.
Es un agente zoonótico de distribución universal. Se transmite por contacto directo o contaminación cruzada durante la manipulación, en el procesado de alimentos o en el hogar, también por vía sexual.
Algunas salmonellas son comunes en la piel de tortugas y de muchos reptiles, lo cual puede ser importante cuando se manipulan a la vez este tipo de mascotas y alimentos.
lunes, 11 de mayo de 2009
Tarea No. 3
Calibre (instrumento)
De Wikipedia, la enciclopedia libre
El calibre, también denominado cartabón de corredera, pie de rey, pie de metro, pie a coliza o Vernier, es un instrumento para medir dimensiones de objetos relativamente pequeños, desde centímetros hasta fracciones de milímetros (1/10 de milímetro, 1/20 de milímetro, 1/50 de milímetro). En la escala de las pulgadas tiene divisiones equivalentes a 1/16 de pulgada, y, en su nonio, de 1/128 de pulgadas.
Es un instrumento sumamente delicado y debe maniobrarse con habilidad, cuidado y delicadeza, con precaución de no rayarlo ni doblarlo (en especial, la coliza de profundidad).
Contenido[ocultar] |
Historia
El primer instrumento de características similares fue encontrado en un naufragio en la isla de Giglio, cerca de la costa italiana, datado en el siglo VI a.C. Aunque considerado raro, fue usado por griegos y romanos. Durante la Dinastía Han (202 a.C. - 220 d.C.), también se utilizó un instrumento similar en China, hecho de bronce, hallado con una inscripción del día, mes y año en que se realizó.
Se atribuye al cosmógrafo y matemático portugués Pedro Núñez (1492-1577) —que inventó el nonio o nonius—, el origen del pie de rey. También se ha llamado pie de rey al vernier, porque hay quien atribuye su invento al geómetra Pierre Vernier (1580-1637), aunque lo que verdaderamente inventó fue la regla de cálculo vernier, que ha sido confundida con el nonio inventado por Pedro Núñez. En castellano, se utiliza con frecuencia la voz nonio para definir esa escala.
El calibre moderno con nonio y lectura de milésimas de pulgada, fue inventado por el americano Joseph R. Brown en 1851. Fue el primer instrumento práctico para efectuar mediciones de precisión que pudo ser vendido a un precio asequible.
Componentes
Consta de una "regla" con una escuadra en un extremo, sobre la cual se desliza otra destinada a indicar la medida en una escala. Permite apreciar longitudes de 1/10, 1/20 y 1/50 de milímetro utilizando el nonio. Mediante piezas especiales en la parte superior y en su extremo, permite medir dimensiones internas y profundidades. Posee dos escalas: la inferior milimétrica y la superior en pulgadas.
- Mordazas para medidas externas.
- Mordazas para medidas internas.
- Coliza para medida de profundidades.
- Escala con divisiones en centímetros y milímetros.
- Escala con divisiones en pulgadas y fracciones de pulgada.
- Nonio para la lectura de las fracciones de milímetros en que esté dividido.
- Nonio para la lectura de las fracciones de pulgada en que esté dividido.
- Botón de deslizamiento y freno.
Tarea No.2
Pruebas Serológicas
Serológia de la Salmonella typhi
Las muestras deben tomarse a partir del doceavo día para que se puedan valorar adecuadamente. Los anticuerpos ( aglutinas) frente el antígeno somático O son de clase IgM e IgA, y pueden dar reacciones cruzadas con otras bacterias. Son los primeros en aparecer ( alos 8 días), elevandose su título moderadamente ( 1/400) y desapareciendo pocas semanas después. Por ello, aún a títulos relativamente bajos ( 1/100) tiene más valor. Los anticuerpos contra el antígeno flagelar H ( anti-H) suelen aparecer hacia el día 10 de la infección y permanecen más tiempo que los anteriores ( a veces años). En general su título tiene valor diagnóstico a partir de 1/500. Siempre deben determinarse ambos anticuerpos. La reacción de Gruber-Widal es una prueba de seroaglutinación( antígeno somático O) que suele positivarse a partir de la 2ª semana de enfermedad ( títulos superiores a 1/100), (o a 1/60 en individuos no vacunados). Es fundamental la comprobación de una variación en el título en muestras sucesivas.
Serología del Toxoplasma
El diagnostico de esta enfermedad tiene especial interés en las mujeres embarazadas, ya que si se produce infección durante este periodo existe riesgo de lesiones fetales. La determinación de la IgM específica ( Prueba de Remington) es la que resuelve más dudas en esta situación ( si se trat de una infección reciente o no).Serología del virus del Herpes
Existen dos virus del Herpes simple serológicamente distintos. El virus del herpes tipo I ( herpes labial) sólo produce lesiones por encima de la cintura. El tipo II ( herpes genital) lo hace siempre por debajo de la cadera. Se pueden cuantificar los niveles de anticuerpos contra dicho virus. Es aconsejable la repetición de la prueba 3 semanas después para comprobar variación en el título. Una determinación aislada inferior a 12 U se considera nagativa, entre 12 y 15 U dudosa y por encima de 15 es positiva.Serología del virus de la Rubéola
Los anticuerpos contra este virus pueden cuantificarse de dos maneras. Mediante inmunofluorescencia ( título de diluciones) o ELISA ( unidades).Como los anticuerpos antitoxoplasma, el diagnóstico de esta infección tiene especial interés durante el embarazo, pues se asocia al desarrollo de malformaciones. En este caso tiene especial interés la determinación de la IgM específica, que puede tardar 1 mes en aparecer , por lo que hay que repetir entonces la prueba 3 semanas después.
| INMUNOFLUORESCENCIA | ELISA | SIGNIFICADO |
| 1/8 | 4-9 U | NEGATIVO |
| 1/16 | 10-25 U | INMUNIDAD BAJA |
| 1/32 | 26-42 U | CIERTA PROTECCIÓN |
| 1/64 | 50-200 U | INFECC.RELATIV. RECIENTE |
| 1/ 1024 | 433-570 U | INFECC. RECIENTE |
En general, títulos iguales o superiores a 1/64 indican buena protección.
Tarea No. 1
Las sustancias organicas son:
son sustancias químicas que contienen carbono, formando enlaces covalentes carbono-carbono y/o carbono-hidrógeno. En muchos casos contienen oxígeno, y también nitrógeno, azufre, fósforo, boro, halógenos y otros elementos. Estos compuestos se denominan Moléculas orgánicas. No son moléculas orgánicas los compuestos que contienen carburos, los carbonatos y los óxidos de carbono.
Las moléculas orgánicas pueden ser de dos tipos:
Moléculas orgánicas naturales: Son las sintetizadas por los seres vivos, y se llaman biomoléculas, las cuales son estudiadas por la bioquímica.
Moléculas orgánicas artificiales: Son sustancias que no existen en la naturaleza y han sido fabricadas por el hombre como los plásticos.
La línea que divide las moléculas orgánicas de las inorgánicas ha originado polémicas e históricamente ha sido arbitraria, pero generalmente, los compuestos orgánicos tienen carbono con enlaces de hidrógeno, y los compuestos inorgánicos, no. Así el ácido carbónico es inorgánico, mientras que el ácido fórmico, el primer ácido graso, es orgánico. El anhídrido carbónico y el monóxido de carbono, son compuestos inorgánicos. Por lo tanto, todas las moléculas orgánicas contienen carbono, pero no todas las moléculas que contienen carbono, son moléculas orgánicas.
EJEMPLOS:
Carbohidratos.
Lípidos.
Aminoácidos.
Proteínas.
Nucleotidos.
Acidos nucleicos.
Las moleculas inorganicas:
la moléculas inorgánicas son aquellas que no tiene carbono por ejemplo la sal común de mesa,cuya fórmula es NaCl (Cloruro de Sodio).
ejemplos:
EL AGUA
definicion
es la molecula inorganica mas abundante tanto en la naturaleza como en la materia viva.
la molecula de agua
consta de dos atomos de hidrogeno unidos a un atomo de oxigeno mediante enlaces covalentes polares lo que determinaque la molecula sea un dipolo cuyo angulo de enlaces es de 104.5 grado, esto favorece a la solvatiacion ionica.
son sustancias químicas que contienen carbono, formando enlaces covalentes carbono-carbono y/o carbono-hidrógeno. En muchos casos contienen oxígeno, y también nitrógeno, azufre, fósforo, boro, halógenos y otros elementos. Estos compuestos se denominan Moléculas orgánicas. No son moléculas orgánicas los compuestos que contienen carburos, los carbonatos y los óxidos de carbono.
Las moléculas orgánicas pueden ser de dos tipos:
Moléculas orgánicas naturales: Son las sintetizadas por los seres vivos, y se llaman biomoléculas, las cuales son estudiadas por la bioquímica.
Moléculas orgánicas artificiales: Son sustancias que no existen en la naturaleza y han sido fabricadas por el hombre como los plásticos.
La línea que divide las moléculas orgánicas de las inorgánicas ha originado polémicas e históricamente ha sido arbitraria, pero generalmente, los compuestos orgánicos tienen carbono con enlaces de hidrógeno, y los compuestos inorgánicos, no. Así el ácido carbónico es inorgánico, mientras que el ácido fórmico, el primer ácido graso, es orgánico. El anhídrido carbónico y el monóxido de carbono, son compuestos inorgánicos. Por lo tanto, todas las moléculas orgánicas contienen carbono, pero no todas las moléculas que contienen carbono, son moléculas orgánicas.
EJEMPLOS:
Carbohidratos.
Lípidos.
Aminoácidos.
Proteínas.
Nucleotidos.
Acidos nucleicos.
Las moleculas inorganicas:
la moléculas inorgánicas son aquellas que no tiene carbono por ejemplo la sal común de mesa,cuya fórmula es NaCl (Cloruro de Sodio).
ejemplos:
EL AGUA
definicion
es la molecula inorganica mas abundante tanto en la naturaleza como en la materia viva.
la molecula de agua
consta de dos atomos de hidrogeno unidos a un atomo de oxigeno mediante enlaces covalentes polares lo que determinaque la molecula sea un dipolo cuyo angulo de enlaces es de 104.5 grado, esto favorece a la solvatiacion ionica.
Camara de Neubawer
Recuento de eritrocitos: ejemplo | ||||
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La imagen de abajo simula el campo que esta viendo al microscopio con un objetivo de 45x. Solo es visible el centro de la grilla. Intenta verificar esto al ir moviendo el campo de derecha-izquierda y de arriba-abajo, como si de una pletina de microscopio se tratase. Cuenta los glóbulos rojos en los cinco cuadrados mencionados anteriormente y determina el recuento de eritrocitos como se ha descrito anteriormente.. Muy importante: Cuando un eritrocito se sitúa en mitad de las líneas superior y/o de la izquierda, entonces es contabilizado. Pero no se contabiliza cuando se sitúa en mitad de las líneas inferior y/o de la derecha.. | |||||
El rango normal de recuento de glóbulos rojos es el siguiente:
Determine el recuento del sujeto cuya muestra aparece en la imagen.
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Técnicas de estudio de líneas celulares Una suspensión celular se caracteriza por presentar un número de partículas microscópicas dispersas en un fluido. Habitualmente será necesario determinar tanto la densidad de las células en la suspensión como el porcentaje de éstas que son viables. Para determinar la densidad de las células se emplean diferentes técnicas, desde la relativamente simple cámara de contaje celular de la que existen numerosas variantes, entre ellas la que empleamos (cámara de Neubauer), hasta equipos automáticos de contaje celular como el "Cell Coulter" de la empresa Beckman-Coulter.
En la unidad de Citometría de flujo y Microscopia Confocal de los Servicios Científico-Técnicos de la Universidad de Barcelona se dispone de contadores celulares. Sin embargo, es posible determinar la densidad celular empleando métodos más sencillos. Nos basta con una cámara de contaje celular, por ej. la cámara de Neubauer, y un microscopio. Una cámara de contaje celular es un dispositivo en el que se coloca una muestra de la suspensión a medir. El dispositivo presenta unas señales que determinan un volumen conocido (x microlitros). Al contar bajo el microscopio el número de partículas presentes en ese volumen se puede determinar la densidad de partículas en la suspensión de origen.
Si contamos las cuatro áreas sombreada (L) observando un total de x células entre las cuatro áreas, la concentración en la suspensión celular será : concentración en la suspensión (células / mL) = 10000 (x/4)
En la red dispones de descripciones detalladas sobre como utilizar un hemocitómetro, como la propuesta por P.J. Hansen, o la detallada descripción que aporta Beckton-Dickinson, y los problemas de cálculo de parámetros celulares que plantea empleando datos obtenidos a partir de un hemocitómetro, y otros protocolos para el contaje de células (en protocol-online) |
se aseptiza el dedo con alcohol y luego se seca al aire o con algodón. Se coge entre el pulgar y el índice y se hace una punción rápida y penetrante a través de la piel de la punta del dedo con una lanceta estéril. | |
2. Se deshecha la primera gota de sangre y se aspira la siguiente con la pipeta de dilución perfectamente limpia y seca hasta la señal 1 o 0.5 (también puede utilizarse la pipeta de hemoglobina, de 20 microlitros). Hay que evitar la entrada de burbujas de aire, pudiendo ayudarnos de un papel de filtro para conseguir el enrasado. | |
3. A continuación se toma con la pipeta líquido de Hayem, isotónico con la sangre, hasta la señal 1; así, la sangre queda diluida al 1/10, si tomamos sangre hasta la señal 1, o al 1/20 si tomamos hasta 0.5. Esto es así porque el volumen de la bola de la pipeta es 100 veces superior al del capilar de la misma. (Si hemos utilizado la pipeta de hemoglobina podemos diluir su contenido en 2 o 4 ml de líquido de Hayem para obtener diluciones 1/100 o 1/200). | |
4. Tomamos la pipeta (o el tubo de ensayo) entre los dedos índice y pulgar y agitamos. A través de la goma de conexión con la pipeta, soplamos para despreciar las primeras gotas por corresponder al líquido que estaba en el capilar. | |
5. Se adapta un cubreobjetos sobre una cámara cuentaglóbulos limpia y seca y se coloca una gota en uno de los lados del cubre; esta gota penetra por capilaridad y rellena el retículo de la misma. | |
6. Una vez preparada la cámara se coloca sobre la platina del microscopio dejándose unos minutos en reposo para que sedimenten los glóbulos. Disponemos el condensador bajo y luz débil; enfocamos primero con el objetivo débil seco y luego se cambia al fuerte seco para proceder al recuento, que se lleva a cabo en los cuadrados pequeños del retículo marcado en color rojo. Finalizado el recuento se procede a la limpieza de la pipeta con acético 1:3, agua destilada y alcohol-éter sucesivamente. | |
7.El volumen de sangre en el cual se han contado las células resulta de multiplicar la profundidad de la cámara por el factor de dilución, la superficie de los cuadrados y el número de cuadrados contados. Con cámara de NEUBAUER: Superficie de 1 cuadrado grande (1/20 mm de lado): Volumen de un cuadrado grande (1/10 mm de profundidad): Si contamos "a" glóbulos rojos en "n" cuadrados pequeños, el número de glóbulos por cuadrado será a/n. Si en un volumen 1/4000 mm3 hay a/n glóbulos rojos, en 1 mm3 habrá X. Luego: siendo X el número de glóbulos rojos existentes por cada mm3 de sangre diluida. Si la sangre se diluyó a 1/100 o 1/200, habrá que multiplicar el valor X por 100 o 200 respectivamente, con lo cual obtendremos un nuevo valor, Y, que representa el número de glóbulos rojos existentes por cada mm3 de sangre (sin diluir). | |
Se utilizan para calcular, mediante el uso del microscopio, el número de partículas (leucocitos, hematíes, bacterias...) por unidad de voluimen de un líquido.
La cámara está constituida por una placa base de vidrio especial pareciso a un porta, su parte central se encuentra separada de los extremos por unas ranuras. en ella se encuentran las cuadrículas de recuento.
La fórmula de contaje es: partículas/mm3= partículas contadas.
Clases de cámaras:
- Neubauer improved: Es el más utilizado (9 cuadros grandes, cada 1 de 1 mm2.)
- Neubauer: La diferencia es el cuadro grande central.
- Thoma: Se utiliza solo para el recuento de eritrocitos.
- Fuchs-Rosenthal: Se utiliza habitualmente para recuento de células en líquidos orgánicos (LCR, Líquido sinovial...)
Practica No. 3
Pipeteo (probeta, pipetas de diferentes medidas)
MATERIALES:
Probeta graduada de 100ml.
2 pipetas de cuello largo y cuello chico
1 caja petri
Vaso de precipitado de 50ml
Cristalizador de 70x50
Pipeta automática
Placa de cristal
Vidrio de reloj
2 pipetas graduadas de 10 ml
Tubo de ensayo
1 pipeta de Sally de 1ml.
PROCEDIMIENTO:
Se vaciaron 1 ml de agua en los 5 tubos de ensaye, utilizando pipetas graduadas de (10ml), para poder comparar.
Se vertieron 19 mililitros de agua en la caja petri.
Se puntearon 1 microlito de agua con la pipeta Pasteur, en las 6 cavidades de la placa para pruebas de inmunologia.
Con la pipeta automática se vertieron 20 microlitos en la cubeta para rotor de monarca
En el vidrio de reloj se vertieron 20 microlitos de agua
Anexo: ocurrió un accidente con la probeta de 100 ml.
Practica No. 1
Uso y Manejo del Microscopio
OBJETIVO: El alumno técnico en Laboratorio clínico aprenderá a usar y manejar adecuadamente el microscopio, aplicándolo en las diferentes áreas del laboratorio teniendo como finalidad el enfoque de los diferentes objetos que se le indiquen.
INTRODUCCION: Los alumnos de laboratorio clínico, deben de utilizar el microscopio de forma adecuada aplicando los conocimientos anteriormente aprendidos, para que puedan obtener un mejor funcionamiento y manejo del mismo ya que en el podrán observar diferentes estructuras diminutas que no se alcanzan a ver de forma microscópica.
MANEJO Y USO DEL MICROSCOPIO ÓPTICO COMPUESTO
Partes de un microscopio óptico |
INSTRUCCIÓN:
1.- De acuerdo al grafico que se te indica, trata de identificar en forma ordenada las partes del microscopio.
2.- Sigue los pasos indicados para que puedas identificar usar y manejar cada una de las partes del microscopio
3.- Partes de un microscopio:
SISTEMA ÓPTICO
•1. OCULAR: Lente situada cerca del ojo del observador (Amplia la imagen del objetivo)
•2. OBJETIVO: Lente situada cerca de la preparación (Amplia la imagen de esta)
•3. CONDENSADOR : Lente que concentra los rayos luminosos sobre la preparación
•4. DIAFRAGMA: Regula la cantidad de luz que entra en el condensador.
•5. FOCO: Dirige los rayos luminosos hacia el condensador.
SISTEMA MECÁNICO
- SOPORTE: Mantiene la parte óptica. Tiene dos partes: el pie o base y el brazo.
- PLATINA: Lugar donde se deposita la preparación.
- CABEZAL: Contiene los sistemas de lentes oculares. Puede ser monocular, binocular o Tríocular...
- REVÓLVER: Contiene los sistemas de lentes objetivos. Permite, al girar, cambiar los objetivos.
- TORNILLOS DE ENFOQUE: Macrométrico que aproxima el enfoque y micrométrico que consigue el enfoque correcto.
4.- Una vez identificadas las partes del microscopio, deberás usar y manejar cada una de ellas de acuerdo a la guía que se te proporciona. Para terminar aprendiendo a enfocar las diferentes muestras.
MANEJO DEL MICROSCOPIO
1 | Colocar el objetivo de menor aumento en posición de empleo y bajar la platina completamente. Si el microscopio se recogió correctamente en el uso anterior, ya debería estar en esas condiciones. |
2 | Colocar la preparación sobre la platina sujetándola con las pinzas metálicas |
3 | Comenzar la observación con el objetivo de 4x (ya está en posición) o colocar el de 10 aumentos (10x) si la preparación es de bacterias. |
4 | •1. Para realizar el enfoque: a.- Acercar al máximo la lente del objetivo a la preparación, empleando el tornillo macrométrico. Esto debe hacerse mirando directamente y no a través del ocular, ya que se corre el riesgo de incrustar el objetivo en la preparación pudiéndose dañar alguno de ellos o ambos
|
5 | Pasar al siguiente objetivo. La imagen debería estar ya casi enfocada y suele ser suficiente con mover un poco el micrométrico para lograr el enfoque fino. Si al cambiar de objetivo se perdió por completo la imagen, es preferible volver a enfocar con el objetivo anterior y repetir la operación desde el paso 3. El objetivo de 40x enfoca a muy poca distancia de la preparación y por ello es fácil que ocurran dos tipos de percances: incrustarlo en la preparación si se descuidan las precauciones anteriores y mancharlo con aceite de inmersión si se observa una preparación que ya se enfocó con el objetivo de inmersión. |
6 | EMPLEO DEL OBJETIVO DE INMERSIÓN: A.- Bajar totalmente la platina
|
5.- Preparar las siguientes muestras para su observación al microscopio:
MATERIALES: 6.- MATERIALES DE LABORATORIO 1.- MICROSCOPIO 2.- ESTUCHE DE DISECCIÓN 3.- PORTAOBJETOS 4.- CUBREOBJETOS 5.- PALILLOS DE MADERA 6.- ABATELENGUA 7.- ASA DE PLATINO O BACTERIOLOGICA 8.- PAPEL PARA MICROSCOPIO 9.- ACEITE DE INMERSIÓN . |
- 1. Muestras de tomate
- 2. Muestras de cebolla
- 3. Muestra de sangre
- 4. Muestra de vegetal (hoja)
6.- Una vez terminada la observación de los materiales ya indicados deberás realizar el mantenimiento y las precauciones debidas del microscopio, siguiendo los siguientes pasos.
MANTENIMIENTO Y PRECAUCIONES
1 | Al finalizar el trabajo, hay que dejar puesto el objetivo de menor aumento en posición de observación, asegurarse de que la parte mecánica de la platina no sobresale del borde de la misma y dejarlo cubierto con su funda. |
2 | Cuando no se está utilizando el microscopio, hay que mantenerlo cubierto con su funda para evitar que se ensucien y dañen las lentes. Si no se va a usar de forma prolongada, se debe guardar en su caja dentro de un armario para protegerlo del polvo |
3 | Nunca hay que tocar las lentes con las manos. Si se ensucian, limpiarlas muy suavemente con un papel de filtro o, mejor, con un papel de óptica. |
4 | No dejar el portaobjetos puesto sobre la platina si no se está utilizando el microscopio. |
5 | Después de utilizar el objetivo de inmersión, hay que limpiar el aceite que queda en el objetivo con pañuelos especiales para óptica o con papel de filtro (menos recomendable). En cualquier caso se pasará el papel por la lente en un solo sentido y con suavidad. Si el aceite ha llegado a secarse y pegarse en el objetivo, hay que limpiarlo con una mezcla de alcohol-acetona (7:3) o xilol. No hay que abusar de este tipo de limpieza, porque si se aplican estos disolventes en exceso se pueden dañar las lentes y su sujeción. |
6 | No forzar nunca los tornillos giratorios del microscopio (macrométrico, micrométrico, platina, revólver y condensador) |
7 | El cambio de objetivo se hace girando el revólver y dirigiendo siempre la mirada a la preparación para prevenir el roce de la lente con la muestra. No cambiar nunca de objetivo agarrándolo por el tubo del mismo ni hacerlo mientras se está observando a través del ocular. |
8 | Mantener seca y limpia la platina del microscopio. Si se derrama sobre ella algún líquido, secarlo con un paño. Si se mancha de aceite, limpiarla con un paño humedecido en xilol. |
9 | Es conveniente limpiar y revisar siempre los microscopios al finalizar la sesión práctica y, al acabar el curso, encargar a un técnico un ajuste y revisión general de los mismos. |
7.- Resultados de los campos microscópicos observados:
Conclusión
Debes de aplicar el número de objetivo donde obtuviste el enfoque adecuado, explicando brevemente tu experiencia obtenida. (Utiliza colores de madera para representar los gráficos).
CONCLUSIONES : |
Centro de Bachillerato Tecnológico Industrial y de Servicios No. 155
Nombre:
Arturo Adrian Yepiz Quezada.
Materia:
Operar Equipo y Material de Trabajo
Grupo:
2L2M
Profesor:
Víctor Manuel Alfaro López.
No. De Mesa:
6
Titulo:
Practica No. 2
Tijuana Baja California a 25 de Marzo del 2009.
Objetivo.
Aprender a utilizar las unidades de medida para la practicarían de la enseñanza ya aprendida, utilizando la destreza de forma individual en los pesos y medidas ya dados y emplearlos como herramientas.
Introducción.
En la antigüedad, las medidas estaban basadas en cosas familiares. La gente usaba para medir las partes del cuerpo: los codos, las manos, los pies y los pulgares. Esto les causaba problemas pues no hay dos personas iguales y las medidas resultaban distintas cada vez. Para el comercio, la ciencia y el diario vivir era necesario un sistema de medidas confiable y que fuera igual para todo el mundo.
Hoy en día la mayoría de los países emplean en Sistema Métrico para medir. En Estados Unidos, Gran Bretaña y Puerto Rico aún se usa el Sistema Inglés que emplea las libras, pulgadas, pies, yardas, millas, etc. Sin embargo, para realizar los trabajos de ciencia debes usar el Sistema Internacional de medidas (SI).
Índice.
- 1. Instrucciones
- 2. Desarrollo
- 3. Conclusiones de la practica
- 4. Fichas bibliográficas.
- 1. Instrucciones.
Aprender a utilizar materiales para medición.
Materiales:
- 1. Pipetas 5 y 10 ml.
- 2. Buretas.
- 3. Probetas 100.
- 4. Matraz Erlen Meyer 250 Ml.
- 5. Baso de precipitado 250 ml.
- 6. Probeta 100 ml.
- 7. Pipeta Volumétrica
- 8. Balanza gran ataría
- 9. Tubo e ensayo
- 10. Perilla de Hule
- 11. Pipeta Pasteur.
- 12. Gotero.
Lugar de trabajo: Laboratorio de análisis clínicos (químicos) equipo de bioseguridad (bata, guantes, gorro, cubre bocas, lápiz, hojas blancas, borrador y plumones o bicolores de madera.
Procedimiento:
- 1. Peso de materiales (masa): El alumno debe de solicitar una balanza gran ataría para realizar el peso de los materiales que se le facilitan registrando el peso de cada elemento de forma ordenada (alfa numérico) además de registrar la capacidad en volumen de cada elemento debe solicitar agua destilada para realizar sus trabajos utilizando el baso de precipitado de 250 ml. Con una capacidad de 200 ml.
- 2. El alumno debe utilizar su habilidad y destreza para poder llevar a cabo esta actividad de peso y medida donde puede tener margen de error en el manejo de la sustancia contra los pesos y medidas que deben utilizar.
- 3. Medición de líquidos con pipetas: En esta actividad debe solicitar 5 tubos de ensayo, una perilla de hule, tapón para tubos de ensayo, tela de maskintape .
- 4. Introducir en la punta de la pipeta en el baso de precipitado que contenga liquido.
- 5. Succione hasta que el liquido hacienda hacia arriba de la marca superior solicitada la cual será de 1 ml, 2 ml, 3 ml, 4 ml y 5 ml.
Para poder verificar las gotas correspondientes a 1 ml debe utilizar una pipeta Pasteur con embolo o globo de pastico manejando 1 ml de agua para realizar puntero en gotas debe solicitar un gotero.
- 6. Solicitar un vidrio de reloj para llevar a cabo el peso de 1 ml de agua destilada y compararla con 1 ml de agua corriente de la llave.
La succión del pipeteo la pueden realizar con la boca si es agua, si con líquidos corrosivos los deben de utilizar con perillas de hule y si es algunas pipetas como la de Salí o pipetas de toma se debe solicitar una manguera especial para estas pipetas.
Para saber si ya esta la cantidad exacta observe la posición del menisco que se forma.
- 7. Realice 5 determinaciones con pipetas de diferentes capacidades para comparar los resultados vacié el contenido de la pipeta en una probeta que tenga capacidad de recibir el liquido que contiene la pipeta
- 8. Lave la pipeta y enjuague con agua destilada, coloque la pipeta en una gradilla o bien en un baso de precipitado de 500 ml.
- 9. Antes de usar una pipeta se deben observar cuidadosamente y entender las marcas de equilibracion y capacidad.
- 2. Desarrollo.
Pesos y medidas 24-marzo-2009
Material Medida Peso
Matraz Erlenmeyer de.......... (250ml)...................132 gramos
Cristalizador de .............. (Sin medida)..............54.5 gramos
Probeta graduada de............ (1000ml)..................125gramos
Vaso de precipitado de.......... (500ml)...................127 gramos
Vaso de precipitado de.......... (50ml).................... 117 gramos
Pipeta graduada de................. (5ml).......................23 gramos
Pipeta Pasteur de................. (Microlitros)............3.8 gramos
Portaobjetos de................ (Sin medida)................5.7 gramos
Cubreobjetos de............... (Sin medida)................1.2 gramos
Bulbo de............................ (Sin medida)...............2.7 gramos
Pipeta graduada...................(4ml)........................23.3 gramos
Estas son las medidas que fueron tomadas en el laboratorio, de acuerdo al material que séle tomo el peso y séle verifico la medida.
- 3. Conclusiones de la práctica.
En esta practica aprenderemos de forma individual el uso de la balanza gran ataría para utilizar los pesos de cada utensilio que empleamos en la medición de los reactivos, también como ir aplicando los conocimientos previos que tenemos respecto al uso y cuidado de los materiales de laboratorios clínicos, la exactitud de cada utensilio demuestra el valor en los resultados obtenidos de los pesos y medidas.
- 4. Fichas bibliográficas.
http://www.elvec.com.mx/pages/imagenes/s_E-1015.gif
http://www.crbiolab.com/Globe%20Scientific%20137030.jpg
http://www.inprot.com.ar/portaobjetos.jpg
http://www.ctr.com.mx/img_prod/1000.jpg
Tarea No. 12
OBJETIVO: El alumno técnico en Laboratorio clínico aprenderá a usar y manejar adecuadamente el microscopio, aplicándolo en las diferentes áreas del laboratorio teniendo como finalidad el enfoque de los diferentes objetos que se le indiquen.
INTRODUCCION: Los alumnos de laboratorio clínico, deben de utilizar el microscopio de forma adecuada aplicando los conocimientos anteriormente aprendidos, para que puedan obtener un mejor funcionamiento y manejo del mismo ya que en el podrán observar diferentes estructuras diminutas que no se alcanzan a ver de forma microscópica.
MANEJO Y USO DEL MICROSCOPIO ÓPTICO COMPUESTO
Partes de un microscopio óptico |
INSTRUCCIÓN:
1.- De acuerdo al grafico que se te indica, trata de identificar en forma ordenada las partes del microscopio.
2.- Sigue los pasos indicados para que puedas identificar usar y manejar cada una de las partes del microscopio
3.- Partes de un microscopio:
SISTEMA ÓPTICO
•1. OCULAR: Lente situada cerca del ojo del observador (Amplia la imagen del objetivo)
•2. OBJETIVO: Lente situada cerca de la preparación (Amplia la imagen de esta)
•3. CONDENSADOR : Lente que concentra los rayos luminosos sobre la preparación
•4. DIAFRAGMA: Regula la cantidad de luz que entra en el condensador.
•5. FOCO: Dirige los rayos luminosos hacia el condensador.
SISTEMA MECÁNICO
- SOPORTE: Mantiene la parte óptica. Tiene dos partes: el pie o base y el brazo.
- PLATINA: Lugar donde se deposita la preparación.
- CABEZAL: Contiene los sistemas de lentes oculares. Puede ser monocular, binocular o Tríocular...
- REVÓLVER: Contiene los sistemas de lentes objetivos. Permite, al girar, cambiar los objetivos.
- TORNILLOS DE ENFOQUE: Macrométrico que aproxima el enfoque y micrométrico que consigue el enfoque correcto.
4.- Una vez identificadas las partes del microscopio, deberás usar y manejar cada una de ellas de acuerdo a la guía que se te proporciona. Para terminar aprendiendo a enfocar las diferentes muestras.
MANEJO DEL MICROSCOPIO
1 | Colocar el objetivo de menor aumento en posición de empleo y bajar la platina completamente. Si el microscopio se recogió correctamente en el uso anterior, ya debería estar en esas condiciones. |
2 | Colocar la preparación sobre la platina sujetándola con las pinzas metálicas |
3 | Comenzar la observación con el objetivo de 4x (ya está en posición) o colocar el de 10 aumentos (10x) si la preparación es de bacterias. |
4 | •1. Para realizar el enfoque: a.- Acercar al máximo la lente del objetivo a la preparación, empleando el tornillo macrométrico. Esto debe hacerse mirando directamente y no a través del ocular, ya que se corre el riesgo de incrustar el objetivo en la preparación pudiéndose dañar alguno de ellos o ambos
|
5 | Pasar al siguiente objetivo. La imagen debería estar ya casi enfocada y suele ser suficiente con mover un poco el micrométrico para lograr el enfoque fino. Si al cambiar de objetivo se perdió por completo la imagen, es preferible volver a enfocar con el objetivo anterior y repetir la operación desde el paso 3. El objetivo de 40x enfoca a muy poca distancia de la preparación y por ello es fácil que ocurran dos tipos de percances: incrustarlo en la preparación si se descuidan las precauciones anteriores y mancharlo con aceite de inmersión si se observa una preparación que ya se enfocó con el objetivo de inmersión. |
6 | EMPLEO DEL OBJETIVO DE INMERSIÓN: A.- Bajar totalmente la platina
|
5.- Preparar las siguientes muestras para su observación al microscopio:
Aceite
MATERIALES: 6.- MATERIALES DE LABORATORIO 1.- MICROSCOPIO 2.- ESTUCHE DE DISECCIÓN 3.- PORTAOBJETOS 4.- CUBREOBJETOS 5.- PALILLOS DE MADERA 6.- ABATELENGUA 7.- ASA DE PLATINO O BACTERIOLOGICA 8.- PAPEL PARA MICROSCOPIO 9.- ACEITE DE INMERSIÓN . |
- 1. Muestras de tomate
- 2. Muestras de cebolla
- 3. Muestra de sangre
- 4. Muestra de vegetal (hoja)
6.- Una vez terminada la observación de los materiales ya indicados deberás realizar el mantenimiento y las precauciones debidas del microscopio, siguiendo los siguientes pasos.
MANTENIMIENTO Y PRECAUCIONES
1 | Al finalizar el trabajo, hay que dejar puesto el objetivo de menor aumento en posición de observación, asegurarse de que la parte mecánica de la platina no sobresale del borde de la misma y dejarlo cubierto con su funda. |
2 | Cuando no se está utilizando el microscopio, hay que mantenerlo cubierto con su funda para evitar que se ensucien y dañen las lentes. Si no se va a usar de forma prolongada, se debe guardar en su caja dentro de un armario para protegerlo del polvo |
3 | Nunca hay que tocar las lentes con las manos. Si se ensucian, limpiarlas muy suavemente con un papel de filtro o, mejor, con un papel de óptica. |
4 | No dejar el portaobjetos puesto sobre la platina si no se está utilizando el microscopio. |
5 | Después de utilizar el objetivo de inmersión, hay que limpiar el aceite que queda en el objetivo con pañuelos especiales para óptica o con papel de filtro (menos recomendable). En cualquier caso se pasará el papel por la lente en un solo sentido y con suavidad. Si el aceite ha llegado a secarse y pegarse en el objetivo, hay que limpiarlo con una mezcla de alcohol-acetona (7:3) o xilol. No hay que abusar de este tipo de limpieza, porque si se aplican estos disolventes en exceso se pueden dañar las lentes y su sujeción. |
6 | No forzar nunca los tornillos giratorios del microscopio (macrométrico, micrométrico, platina, revólver y condensador) |
7 | El cambio de objetivo se hace girando el revólver y dirigiendo siempre la mirada a la preparación para prevenir el roce de la lente con la muestra. No cambiar nunca de objetivo agarrándolo por el tubo del mismo ni hacerlo mientras se está observando a través del ocular. |
8 | Mantener seca y limpia la platina del microscopio. Si se derrama sobre ella algún líquido, secarlo con un paño. Si se mancha de aceite, limpiarla con un paño humedecido en xilol. |
9 | Es conveniente limpiar y revisar siempre los microscopios al finalizar la sesión práctica y, al acabar el curso, encargar a un técnico un ajuste y revisión general de los mismos. |
7.- Resultados de los campos microscópicos observados:
Conclusión
Debes de aplicar el número de objetivo donde obtuviste el enfoque adecuado, explicando brevemente tu experiencia obtenida. (Utiliza colores de madera para representar los gráficos).
Tarea No. 11
LABORATORIO DE ANÁLISIS CLÍNICOS
PRÁCTICA DE USO Y MANEJO DE MICROSCOPIO
OBJETIVO:
El alumno aprenderá a usar y manejar adecuadamente el microscopio,
INTRODUCCION: Entre los seres vivos que existen sobre el planeta hay muchos cuya estructura es tan pequeña que no se ven sin ayuda de instrumentos; el ojo humano es incapaz de percibir un objeto cuyo diámetro sea menor de 0.1 mm, para el estudio de dichos organismos se requiere usar el microscopio, instrumento que aumenta ciento de veces la imagen del objeto que se observa
1.- De acuerdo al grafico que se te indica, trata de identificar en forma ordenada las partes del microscopio.
2.- Sigue los pasos indicados para que puedas identificar usar y manejar cada una de las partes del microscopio
3.- Partes de un microscopio:
SISTEMA ÓPTICO
OCULAR: Lente situada cerca del ojo del observador (Amplia la imagen del objetivo)
OBJETIVO: Lente situada cerca de la preparación (Amplia la imagen de esta)
CONDENSADOR : Lente que concentra los rayos luminosos sobre la preparación
DIAFRAGMA: Regula la cantidad de luz que entra en el condensador.
FOCO: Dirige los rayos luminosos hacia el condensador.
SISTEMA MECÁNICO
SOPORTE: Mantiene la parte óptica. Tiene dos partes: el pie o base y el brazo.
PLATINA: Lugar donde se deposita la preparación.
CABEZAL: Contiene los sistemas de lentes oculares. Puede ser monocular, binocular o Tríocular...
REVÓLVER: Contiene los sistemas de lentes objetivos. Permite, al girar, cambiar los objetivos.
TORNILLOS DE ENFOQUE: Macrométrico que aproxima el enfoque y micrométrico que consigue el enfoque correcto.
4.- Una vez identificadas las partes del microscopio, deberás usar y manejar cada una de ellas de acuerdo a la guía que se te proporciona. Para terminar aprendiendo a enfocar las diferentes muestras.
Colocar el objetivo de menor aumento en posición de empleo y bajar la platina completamente. Si el microscopio se recogió correctamente en el uso anterior, ya debería estar en esas condiciones |
Colocar la preparación sobre la platina sujetándola con las pinzas metálicas |
Comenzar la observación con el objetivo de 4x (ya está en posición) o colocar el de 10 aumentos (10x) si la preparación es de bacterias |
| 1.Para realizar el enfoque: a.- Acercar al máximo la lente del objetivo a la preparación, empleando el tornillo macrométrico. Esto debe hacerse mirando directamente y no a través del ocular, ya que se corre el riesgo de incrustar el objetivo en la preparación pudiéndose dañar alguno de ellos o ambos b.- Mirando, ahora sí, a través de los oculares, ir separando lentamente el objetivo de la preparación con el macrométrico y, cuando se observe algo nítida la muestra, girar el micrométrico hasta obtener un enfoque fino. |
Pasar al siguiente objetivo. La imagen debería estar ya casi enfocada y suele ser suficiente con mover un poco el micrométrico para lograr el enfoque fino. Si al cambiar de objetivo se perdió por completo la imagen, es preferible volver a enfocar con el objetivo anterior y repetir la operación desde el paso 3. El objetivo de 40x enfoca a muy poca distancia de la preparación y por ello es fácil que ocurran dos tipos de percances: incrustarlo en la preparación si se descuidan las precauciones anteriores y mancharlo con aceite de inmersión si se observa una preparación que ya se enfocó con el objetivo de inmersión. |
EMPLEO DEL OBJETIVO DE INMERSIÓN: A.- Bajar totalmente la platina B.- Subir totalmente el condensador para ver claramente el círculo de luz que nos indica la zona que se va a visualizar y donde habrá que echar el aceite. C.- Girar el revólver hacia el objetivo de inmersión dejándolo a medio camino entre éste y el de x40. D.- Colocar una gota mínima de aceite de inmersión sobre el círculo de luz. E.- Terminar de girar suavemente el revólver hasta la posición del objetivo de inmersión. F.- Mirando directamente al objetivo, subir la platina lentamente hasta que la lente toca la gota de aceite. En ese momento se nota como si la gota ascendiera y se adosara a la lente. G.- Enfocar cuidadosamente con el micrométrico. La distancia de trabajo entre el objetivo de inmersión y la preparación es mínima, aun menor que con el de 40x por lo que el riesgo de accidente es muy grande. H.- Una vez se haya puesto aceite de inmersión sobre la preparación, ya no se puede volver a usar el objetivo 40x sobre esa zona, pues se mancharía de aceite. Por tanto, si desea enfocar otro campo, hay que bajar la platina y repetir la operación desde el paso 3. I.- Una vez finalizada la observación de la preparación se baja la platina y se coloca el objetivo de menor aumento girando el revólver. En este momento ya se puede retirar la preparación de la platina. Nunca se debe retirar con el objetivo de inmersión en posición de observación. J.- Limpiar el objetivo de inmersión con cuidado empleando un papel especial para óptica. Comprobar también que el objetivo 40x está perfectamente limpio. |
5.- Preparar las siguientes muestras para su observación al microscopio:
1.- Muestras de tomate
2.-Muestras de cebolla
3.-Muestra de sangre
4.-Muestra de vegetal (hoja)
6.- MATERIALES DE LABORATORIO
1.- MICROSCOPIO
2.- ESTUCHE DE DISECCIÓN
3.- PORTAOBJETOS
4.- CUBREOBJETOS
5.- PALILLOS DE MADERA
6.- ABATELENGUA
7.- ASA DE PLATINO O BACTERIOLOGICA
8.- PAPEL PARA MICROSCOPIO
9.- ACEITE DE INMERSIÓN .
6.- Una vez terminada la observación de los materiales ya indicados deberás realizar el mantenimiento y las precauciones debidas del microscopio, siguiendo los siguientes pasos.
1.-Al finalizar el trabajo, hay que dejar puesto el objetivo de menor aumento en posición de observación, asegurarse de que la parte mecánica de la platina no sobresale del borde de la misma y dejarlo cubierto con su funda.
2.-Cuando no se está utilizando el microscopio, hay que mantenerlo cubierto con su funda para evitar que se ensucien y dañen las lentes. Si no se va a usar de forma prolongada, se debe guardar en su caja dentro de un armario para protegerlo del polvo
3.-Nunca hay que tocar las lentes con las manos. Si se ensucian, limpiarlas muy suavemente con un papel de filtro o, mejor, con un papel de óptica.
4.-No dejar el portaobjetos puesto sobre la platina si no se está utilizando el microscopio
5.-Después de utilizar el objetivo de inmersión, hay que limpiar el aceite que queda en el objetivo con pañuelos especiales para óptica o con papel de filtro (menos recomendable). En cualquier caso se pasará el papel por la lente en un solo sentido y con suavidad. Si el aceite ha llegado a secarse y pegarse en el objetivo, hay que limpiarlo con una mezcla de alcohol-acetona (7:3) o xilol. No hay que abusar de este tipo de limpieza, porque si se aplican estos disolventes en exceso se pueden dañar las lentes y su sujeción.
6.-No forzar nunca los tornillos giratorios del microscopio (macrométrico, micrométrico, platina, revólver y condensador)
7.-El cambio de objetivo se hace girando el revólver y dirigiendo siempre la mirada a la preparación para prevenir el roce de la lente con la muestra. No cambiar nunca de objetivo agarrándolo por el tubo del mismo ni hacerlo mientras se está observando a través del ocular.
8.-Mantener seca y limpia la platina del microscopio. Si se derrama sobre ella algún líquido, secarlo con un paño. Si se mancha de aceite, limpiarla con un paño humedecido en xilol.
9.-Es conveniente limpiar y revisar siempre los microscopios al finalizar la sesión práctica y, al acabar el curso, encargar a un técnico un ajuste y revisión general de los mismos.
7.- Resultados de los campos microscópicos observados:
Debes de aplicar el número de objetivo donde obtuviste el enfoque adecuado, explicando brevemente tu experiencia obtenida. (utiliza colores de madera para representar los gráficos).
Tarea No. 9
Es una herramienta de apoyo en laboratorio de análisis clínicos como equipo de eterización de calor húmedo. Este equipo en su estructura presenta una olla de acero inoxidable con capacidad variable en litros y se utiliza con agua destilada.
Consta de los siguientes elementos..
1) Tapa de cierre hermético y una válvula de escape con una manguera interior corrugada y además presenta la parte superior de la misma un reloj que nos marca libras como temperatura y se le da el nombre de manómetro.
2) Esta tapa se asegura con grilletes en los costados en números de 6 los cuales deben de ir asegurados dándoles vuelta en rosca, conforme a las manecillas del reloj y se debe de ajustar en cruz. Ya que, si no se lleva a cabo este tipo de ajuste la tapa queda insegura y puede provocar un accidente.
3) Contiene una olla de acero inoxidable con 2, los productos que se van a esterilizar debidamente etiquetados y estos pueden ser materiales de cristalería, plástico, maderas, reactivos (métodos de cultivo) y todo material que se pretenda esterilizar.
4) En su parte interior va por encima de la resistencia y a nivel de la rendija o parrilla se le pone agua destila, se pone a su nivel la que se debe medir en cantidad y volumen.
5) La resistencia que contenga esta olla trabaja con resistencia alterna amperes, la cual contiene en la parte exterior un cable de toma corriente de 100 voltios y además de que cuenta con un dispositivo de encendido, una perilla para elevar temperatura y un foco que indica la luz de encendido.
6) Este autoclave trabaja con 15 libras de presión lo que nos da como resultado 120-22 grados de temperatura en grados Celsius los cuales tendremos que convertir en Kelvin y Fahrenheit.
7) Para poder operar esta autoclave se requiere de purgar por medio de la válvula de escape abriéndola y cerrándola cuidadosamente una vez que el nanómetro marque 7 libras, dejamos nuevamente en 0 para que inicie nuevamente la presión interna hasta que llegue a 15 libras por 120 grados centígrados de temperatura.
Una vez que ya alcanzo la altura máxima solicitada se tiene el cuidado de checar que esa temperatura no se rebase durante 20 minutos o media hora tiempo necesario con 120 grados de temperatura que nos da un proceso de esterilización adecuada.
8) De acuerdo al proceso de esterilización realizado se deja enfriar gradualmente al equipo apoyándose con la salida de vapor por medio de la válvula de escape, la que para poder operar se requiere optimizar protección en las manos con guantes para alta temperatura así evitando un accidente por quemaduras, no se debe de hacer escapar el vapor de frente al individuo si no que debe hacerse de forma literal.
Una vez que ya esté totalmente fría se acude a destapar el equipo igual que como se tapo (en cruz), ya retirada la tapa se extrae el producto esterilizado.
9) Es importante que el grupo de trabajo que va a ocupar el material de laboratorio y que aplicara técnica de esterilización deben de coordinarse al entrar a laboratorio y ponerse de acuerdo a que mesa le toca preparar el equipo de esterilización, debe ser de inmediato ya que desde conectar el equipo se requiere para alcanzar la temperatura de ebullición se requiere media hora por lo que se debe de tener cuidado en sus tiempos.
Tiempos de trabajo en esterilización.
-Preparar equipo de esterilización por calor húmedo, hasta alcanzar la ebullición, 30 minutos.
-Tiempo necesario para alcanzar la esterilización de los productos, 30 minutos.
-Tiempo para poder retirar los productos de esterilización hasta que este frio, 20 minutos.
-Para poder ocupar el producto extraído del autoclave, 15 minutos.
-Reporte de la actividad en mesa, 10 minutos.
-Programa sol (seguridad, orden y limpieza), 15 minutos.
Nota.
Tarea No. 8
PRECAUCIONES EN EL LABORATORIO.
En los laboratorios de Química se trabajan con sustancias potencialmente peligrosas, en ese caso es necesario tomar precauciones para evitar accidentes.
Algunas normas importantes son:
1-Traer bata para cuando nos toque laboratorio.
2-No comer en el laboratorio
3-No manipular material ningún material sin autorización del profesor.
4- Aclarar con el profesor las dudas y mantenerle informado de cualquier hecho que ocurra.
5- Antes de empezar una práctica debes conocer y entender los procesos que vas a realizar.
6- Evita los desplazamientos innecesarios y nunca corras.
7- Mantén silencio y procura estar concentrado en lo que haces.
8- Coloca los aparatos y reactivos lejos del borde de la mesa.
9-No pipetees nunca líquidos corrosivos o venenosos.
10-Mantén las sustancias inflamables lejos de las llamas de los mecheros, y no las calientes o destiles directamente con el mechero.
11-Nunca mires por la boca de los tubos de ensayo o matraces cuando se está realizando una reacción, en previsión de salpicaduras.
12-En general, todos los productos deben mezclarse en pequeñas cantidades y despacio.
13-Si por descuido tocas o te cae algún producto, lávate con abundante agua la zona afectada, y comunícalo al profesor.
14-Utiliza la campana en las prácticas donde se desprendan gases venenosos.
15-Tira los residuos sólidos a la papelera.
16-Abre el grifo antes de tirar por la pila los restos de una reacción o reactivo.
17-Al acabar, deja limpio y seco el material y puesto de trabajo.
18- En caso de contacto de los ojos con algún reactivo, remítase inmediatamente al lavaojos, acercando los ojos a las salidas de agua de éste y presionando la palanca.
19- Asegúrese de conocer la ubicación de los extintores existentes en el recinto y su manejo.
20-No se deben calentar sustancias en utensilios de vidrio averiados o en mal estado.
21-Infórmese sobre los peligros de fuego, explosión e intoxicación de las sustancias utilizadas en los experimentos.
22- Toda reacción en la cual se desprendan vapores que irriten la piel, tóxicas o de olor desagradable, debe efectuarse en un área bien ventilada.
23- Siempre que necesite encender el mechero recuerde lo siguiente: Encienda un fósforo aproximándolo a la boca del mechero, luego abra lentamente la llave del mechero graduando la llama de acuerdo a lo requerido, al terminar cierre correctamente la llave.
24- No dejar el mechero encendido y sin prestarle atención.
25-Siempre que se origine un fuego se deben apartar las sustancias inflamables. La mayoría del fuego que se produce sobre las mesas de trabajo se pueden controlar con facilidad. Así sea con un trapo húmedo en pequeñas áreas, tapando o cerrando el recipiente, etc. Se presenta un poco de dificultad cuando se desea extinguir compuestos que puedan quemarse en su totalidad sin recibir oxígeno exterior. Cuando no ocurre esto, basta eliminar la entrada de aire y en esta forma cesa la combustión.
INTRODUCCIÓN
En el estudio de la química exige la importancia de realizar trabajos prácticos. De esta manera , los estudiantes deben poder todo su empeño y ganas de aprender para descubrir nuevos conocimientos que servirán para un mañana no muy lejano y a demás tratar de seguir aplicando todos los conocimientos inculcados para mejorar cada dia más.
OBJETIVO GENERAL
Reconocer las partes y elementos de laboratorio y saber para sirven harás en equipo pero participando en todas las partes que se realicen y comparando los resultados obtenidos .
OBJETIVO ESPECIFICO
Saber manipular los implementos del laboratorio realizar con serieda las prácticas y tomar bien los apuntes en el laboratorio.
MATERIALES DE CRISTALERIA.
Nombre | Función | Imagen |
Balanza analítica eléctrica de un solo platillo | Sirve para medir masa, esta balanza funciona digitalmente. Cuando se coloca alguna materia sobre su plato de medición, esta despliega en una pantalla electrónica la masa de dicha materia. |
|
Balanza de triple brazo y un platillo | Esta balanza consiste en un platillo, donde se miden las masas de los sólidos. Esta consiste en la comparación en una masa ya establecida en el brazo, que desliza sobre una barra con las medidas de masa pertinentes. Al quedar balanceado el sistema, se puede ver la masa del objeto en el punto que se marca en el brazo de la balanza. | |
Balanza analítica de doble platillo | Esta sirve para comparar masas, y consiste en una balanza común con dos platillos para la comparación de masas. | |
Bureta | La bureta es utilizada para medir el volumen de una solución que reacciona con un volumen conocido de otra solución. Ahora con los avances de la tecnología se han desarrollado buretas electrónicas, como la que se muestra e la imagen. |
|
Pipeta gotero | Este es una pipeta hecha de vidrio que tiene por función trasvasar pequeñas cantidades de líquido, de un recipiente a otro, cuando no es necesario realizar mediciones. Su función es la misma que la de un gotero. |
|
Pipeta graduada | medir un volumen exacto de líquido, con bastante precisión, y trasvasarlo de un recipiente a otro. |
|
Picnómetro | También se le llama botella de densidad relativa, pues se usa para calcular la densidad de un líquido. |
|
Aerómetro | Este es un instrumento que se utiliza para la medición de la densidad relativa de un líquido. |
|
Probeta graduada | Este contenedor sirve para medir volúmenes de líquidos. |
|
Termómetro | Es un instrumento fabricado de vidrio, con escalas, que sirve para medir temperaturas. Estos pueden medir las temperaturas en °K, °C, °F y °R. Hay distintos tipos de termómetros, algunos son de inmersión total, parcial o ajustable. |
|
Equipos de calefacción y contención:
Nombre | Función | Imagen |
Balón volumétrico (matraz aforado) | Este contenedor, sirve para contener alguna solución, pero solo de determinado volumen. |
|
Balón de destilación | Este sirve para calentar líquidos, cuyos vapores deben seguir un camino obligado (hacia el refrigerante), por lo cual cuentan con una salida lateral. Es utilizado para procesos como la destilación. |
|
Cápsula de porcelana | Sirve para calentar o fundir sustancias sólidas o evaporar líquidos. |
|
Cristalizador | Es utilizado en la evaporación de sustancias. | |
Erlenmeyer (Matraz) | Es un contenedor similar al balón cuya función es calentar líquidos cuyos vapores no deben estar en contacto con la fuente de calor. |
|
Mechero de alcohol | Es una fuente de calor, de baja intensidad, que funciona con alcohol etílico. Como un accesorio de seguridad se utiliza una pieza que en caso de accidente, cubre la entrada de oxígeno, de manera que el fuego se sofoca. | |
Mechero de BUNSEN | Este consiste en un mechero, es decir una regulación del gas para que al reaccionar con el oxígeno del aire y una fuente de ignición, inicien una reacción exotérmica para que así funcione como una fuente de calor. | |
Refrigerante | Esta es una pieza que se utiliza para el proceso de destilación, se utiliza para condensar los vapores de el o los líquidos que intervienen en la destilación. | |
Soxhlet | Este funciona como un cilindro de vidrio, vertical de aproximadamente un pie de alto y una pulgada y media de diámetro. La columna está dividida en una cámara superior e inferior. La superior o cámara de muestra sostiene un sólido o polvo del cual se extraerán químicos. La cámara de solvente, exactamente abajo, contiene una reserva de solvente orgánico, ether o alcohol. Dos tubos vacíos, o brazos corren a lo largo, a un lado de la columna para conectar las dos cámaras. El brazo de vapor, corre en línea recta desde la parte superior de la cámara del solvente a la parte superior de la cámara del sólido. El oro brazo, el retorno de solvente, describe dos U sobre puestas, que llevan desde la cámara de la muestra el solvente hasta la cámara de solvente. El soxhlet funciona cíclicamente, para extraer las concentraciones necesarias, de algún determinado químico. Este funciona, cuando se evapora el solvente sube su gas, hasta el área donde es condensado, aquí al caer y regresar a la cámara de solvente va separando los químicos, hasta que se llega a una concentración deseada, esto puede ocasionar problemas con algunos compuestos, que con los ciclos llevan a un rompimiento, como lo es el ámbar. | |
Tubos de ensayo | Es un tubo de vidrio, sin escalas, cuya función es disolver, calentar o hacer reaccionar pequeñas cantidades de sustancia. |
|
Vaso de precipitados (Beacker) | Es un contenedor de vidrio, utilizado para preparar, disolver o calentar sustancias. | |
Elementos de soporte:
Nombre | Función | Imagen |
Broche de madera | Pieza de madera utilizada para sujetar tubos de ensayo. |
|
Doble Nuez | Sirve para sujetar aro de bunsen, pinza para balón y otros soportes similares. | |
Gradilla | apoyar tubos de ensayo. | |
Pinza para balón | Utilizadas para sujetar el balón. | |
Pinza para crisoles | Estas pinzas son utilizadas para sujetar crisoles. | |
Soporte universal | se utiliza en el armado de muchos equipos de laboratorio. | |
Triángulo de pipa | sostener un crisol, mientras es sometido a la llama del mechero. |
|
Trípode | Es una pieza utilizada para apoyar la tela de amianto. | |
Elementos varios:
Nombre | Función | Imagen |
Campana | se utiliza cuando se necesitan evaporar sustancias tóxicas. |
|
Embudo | trasvasar líquidos de un recipiente a otro, evitando que se derrame líquido; también se utiliza mucho en operaciones de filtración. | |
Escobilla | limpiar el material de laboratorio. | |
Mortero con pilón | machacar y/o triturar sustancias sólidas. | |
Papel de filtro | Es un papel utilizado para filtrar, dependiendo de las partículas que se deseen filtrar, es el tipo de papel que se utiliza; se usan junto con un embudo. |
|
Propipeta | Para evitar succionar con la boca líquidos venenosos, corrosivos o que emitan vapores. Se utiliza junto con una pipeta graduada. | |
Varilla de vidrio | mezclar o agitar sustancias; también en ciertas operaciones en que se necesita trasvasar un líquido, para evitar que éste se derrame. |
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Principio del formulario
Principio del formulario
Final del formulario
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PROBETA GRADUADA Probeta, instrumento de laboratorio que se utiliza, sobre todo en análisis químico, para contener o medir volúmenes de líquidos de una forma aproximada. Es un recipiente cilíndrico de vidrio con una base ancha, que generalmente lleva en la parte superior un pico para verter el líquido con mayor facilidad. Las probetas suelen ser graduadas, es decir, llevan grabada una escala (por la parte exterior) que permite medir un determinado volumen, aunque sin mucha exactitud. Cuando se requiere una mayor precisión se recurre a otros instrumentos, por ejemplo las pipetas.
VASO LABORATORIO Son frascos cerrados con un tapón atravesado por dos tubos. Por uno de ellos se sopla,saliendo el agua por el otro. Se utilizan para enjuagar el material de laboratorio. También los hay de plástico, con un sólo orificio de salida, por el que sale el agua al presionar el frasco. EMBUDO BUCHNER Es un embudo con la base agujereada. Se acopla por su extremo inferior mediante un corcho taladrado al matraz kitasato. Encima de los orificios se coloca un papel de filtro. Se utiliza para filtrar sustancias pastosas TUBO TIEL El tubo tiel es de vidrio se utiliza para la determinación de puntos de fusión. Para ello se llenan de una sustancia de elevado punto de ebullición, como la parafina. Por las prolongaciones laterales se introduce el/los capilares con la sustancia cuyo punto de ebullición queremos determinar. Por la abertura superior, mediante un corcho agujereado se acopla un termómetro, cuyo bulbo debe quedar junto al extremos del capilar con la sustancia. Con el mechero, suavemente, vamos calentando por la parte inferior, observando cuando la sustancia empieza a fundirse, momento en el que anotamos la temperatura marcada por el termómetro. CRISOL GUSH O CRISOL FILTRANTE Suele ser de porcelana, de un metal inerte o de algún tipo de material refractario. Se utiliza para calcinar o fundir sustancias. Se calienta a fuego directo. Es similar a las cápsulas. VASOS DE PRECIPITADO Tienen un campo de aplicación muy extenso: se usan para preparar , disolver o calentar sustancias . Junto con el matraz , la probeta y los tubos de ensayo constituyen lo que se llama en el laboratorio "Material de vidrio de uso general". Se fabrican en vidrio ordinario y en "PIREX" , y de distintos tamaños . Son cilíndricos y en la boca llevan un pequeño apéndice en forma de pico para facilitar el vertido de las sustancias cuando se transvasan. Puede ir aforados o graduados , si bien su exactitud es menor que la de un matraz aforado o una probeta. APARATO DE KIPP Consta de dos piezas de cristal, la superior en forma de pera de largo cuello que entra a esmeril en la inferior. Ésta se compone de dos cavidades esféricas unidas por una garganta. La superior tiene una tubuladura que se cierra con un tapón y un tubo con llave o pinza para regular el desprendimiento de los gases. La inferior suele tener también otro tubo al pie para la limpieza del aparato. MATRAZ KITASATO Es un matraz de pared gruesa, con una tubuladura lateral. En la boca se acopla, mediante un corcho agujereado el butchner, y a la tubuladura, mediante una goma, la trompa de agua (o trompa de vacío). De esta forma se consigue filtrar sustancias pastosas. |
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